ID | Pływ | Kolor | Z |
0,13 mm | Do 2,0 ml/min | Czerwony | 1/16" |
0,18 mm | Do 5,0 ml/min | Żółty | 1/16" |
0,25 mm | Do 20 ml/min | Niebieski | 1/16" |
0,50 mm | Do 50 ml/min | Pomarańczowy | 1/16" |
0,75 mm | Do 100 ml/min | Zielony | 1/16" |
1,0 mm | Do 200 ml/min | Szary | 1/16" |
1,59 mm | Do 500 ml/min | 1/8"". | |
2,40 mm | Do 1000 ml/min | 1/8"". |
Cale do mm - cale x 25,4 = mm
Stopy na metr - stopy x 0,3048 = metr
Ciśnienie w kolumnie przy szybkości przepływu 1 ml/min
P = 2,1 xdx 10,13 xh / h 2 x vp 2
P – ciśnienie (MPa)
L – długość kolumny w mm
h - lepkość dynamiczna (dla wody = 1)
d – średnica wewnętrzna kolumny w mm
vp – wielkość cząstek w µm
Ciśnienie na kolumnie 4,6 x 250 mm, 5 um wyniesie ok. 100 barów przy szybkości przepływu 1,0 ml/min
ID (mm) | Wartość wtrysku (µl) | Pojemność kolumny (mg) | Przepływ (ml/min) |
4,6 | 5-100 | 1 | 0,5 - 2,0 |
10 | 100-1000 | 5 | 4,0 - 15,0 |
21,2 | 1000-5000 | 20 | 10 – 50 |
30 | 2000 – 10 000 | 40 | 40 – 100 |
50 | 5000 – 20 000 | 120 | 100-300 |
100 | 10 000 – 50 000 | 500 | 400–1000 |
pK oraz bufory kwasowe i zasadowe w HPLC do przygotowania fazy ruchomej
Bufor kwasowy | Temperatura (°C) | pK 1 | pK 2 | pK 3 | |
ACES kwas 2-[(2-amino-2-oksoetylo)amino]etanosulfonowy | 20 | 6,9 | - | - | |
Kwas octowy | 25 | 4,8 | - | - | |
Kwas borowy | 20 | 9,1 | 12,7 | 13,8 | |
CAPS kwas 3-(cykloheksyloamino)etanosulfonowy | 20 | 10,4 | - | - | |
Kwas cytrynowy | 25 | 3.1 | 4,8 | 6,4 | |
Kwas mrówkowy | 20 | 3,8 | - | - | |
Glicyna | 25 | 2,3 | 9,6 | - | |
Glicyloglicyna | 20 | 8.4 | - | - | |
HEPES Kwas N-2-hydroksyetylopiperazyno-N'-2-etanosulfonowy | 20 | 7,6 | - | - | |
imidazol | 20 | 7,0 | - | - | |
MES Kwas 2-(N-morfolino)etanosulfonowy | 20 | 6,2 | - | - | |
MOPS kwas 3-(N-morfolino)propanosulfonowy | 20 | 7,2 | - | - | |
Kwas szczawiowy | 25 | 1,3 | 4,3 | - | |
Kwas fosforowy | 25 | 2,1 | 7,2 | 12,7 | |
TES kwas 2-[tris(hydroksymetylo)metylo]aminoetanosulfonowy | 20 | 7,5 | - | - | |
Kwas trifluorooctowy | 25 | 0,3 | - | - | |
Tricyna N-[tris(hydroksymetylo)metylo]glicyna | 20 | 8,2 | - | - | |
TRIS Tris(hydroksymetylo)aminometan | 20 | 8,3 | - | - | |
pKb zasad w HPLC do przygotowania fazy ruchomej | |||||
Zaszczepiony bufor | temperatura (°C) | pK 1 | pK 2 | pK 3 | |
Amoniak | 25 | 9,3 | - | - | |
dietyloamina | 20 | 11.1 | - | - | |
dimetyloamina | 25 | 10,7 | - | - | |
Etyloamina | 20 | 10,8 | - | - | |
Etylenodiamina | 20 | 10.1 | 7,0 | - | |
metyloamina | 25 | 10,7 | - | - | |
Morfolina | 25 | 8,3 | - | - | |
trietyloamina (TEA) | 18 | 11,0 | - | - | |
trimetyloamina | 25 | 9,8 | - | - | |
Uwaga: Zakres pH, dla którego jest odpowiedni, mieści się w zakresie pK ± 1. Należy wziąć pod uwagę wartość odcięcia UV stosowanego buforu (tabela 2)
Transfer metody (od konwencjonalnej HPLC do UHPLC)
Pojemność próbki (w jaki sposób mniejsze cząstki wpływają na pojemność próbki?)
Przenoszenie metod z klasycznej HPLC do UHPLC wymaga najpierw optymalizacji selektywności i wydajności kolumny dla pożądanego zastosowania. Po zakończeniu tej części opracowania metody możemy przejść do przeniesienia metody do UHPLC. Aby to zrobić, będziemy mogli wykorzystać nieskomplikowane obliczenia, aby pomóc w ustaleniu równoważnych warunków separacji. Artykuł ten jest stopniowo opisywany.
Pierwsze obliczenie określa odpowiednią długość kolumny chromatograficznej. Utrzymując długość kolumny i zmniejszając rozmiar cząstek, zwiększa się liczba teoretycznych łat na kolumnie. Dlatego możemy skrócić kolumnę bez utraty rozróżnienia. Stosując wzór 1 i wybierając odpowiednią długość kolumny, zachowamy ten sam rozdział jak dla HPLC z węzłem.
Po ustaleniu odpowiedniej długości kolumny możemy zoptymalizować objętość wtrysku. Poprzez zmniejszenie średnicy wewnętrznej i długości kolumny zmniejsza się całkowita objętość i pojemność próbki. Dlatego musimy dostosować objętość opryskiwania zgodnie ze wzorem 2 . W tym przypadku należy zdać sobie sprawę, że przez zmniejszenie całkowitej objętości kolumny bardzo ważne jest zapewnienie kompatybilności próbki rozpuszczalnika z kompozycją fazy ruchomej. W przeciwnym razie mogą wystąpić czasy retencji, wydajność, a nawet zmiana w selektywności.
Natężenie przepływu musi być ustawione tak, aby zapewnić odpowiednią prędkość liniową dla mniejszej kolumny. Jest to zdefiniowane jako odległość osiągnięta przez fazę ruchomą przez jednostkę czasu (w przeciwieństwie do prędkości przepływu, która jest zdefiniowana jako objętość fazy ruchomej przechodzącej przez kolumnę chromatograficzną w czasie). Aby utrzymać taką samą prędkość liniową, która jest ważna dla utrzymania wydajności, natężenie przepływu fazy ruchomej musi zostać zmniejszone poprzez zmniejszenie średnicy kolumny. W przypadku separacji izokratycznej przepływ w kolumnie można obliczyć zgodnie ze wzorem 3 (należy również wziąć pod uwagę wielkość cząstek). Powinno to być szybkie i łatwe oszacowanie ustawienia natężenia przepływu dla równoważnej chromatografii. W tym miejscu należy zauważyć, że cząstki mniejsze niż 2 μm są mniej podatne na większe prędkości przepływu, a zatem można stosować większe szybkości przepływu w separacjach izokratycznych bez szkodliwego wpływu na skuteczność oddzielania.
Na koniec, po zoptymalizowaniu długości kolumny, objętości oprysku i przepływu, możemy przejść do początku gradientu. Przenosząc metodę z konwencjonalnej HPLC do UHPLC, musimy jednocześnie dopasować interakcję gradientu do faz. Tutaj ustawiamy to za pomocą wzoru 4 .
Literatura: Rick Lake, Restek Corporation
% wody | lepkość (MeOH / woda) | lepkość (AcCN / woda) |
---|---|---|
0 | 0,65 | 0,35 |
10 | 0,95 | 0,50 |
20 | 1,20 | 0,55 |
30 | 1,60 | 0,70 |
40 | 1,75 | 0,80 |
50 | 1,90 | 0,90 |
60 | 1,80 | 1,00 |
70 | 1,75 | 1,05 |
80 | 1,65 | 1.10 |
90 | 1,40 | 1,05 |
100 | 1,00 | 1,00 |
Wybór kapilary dla różnych prędkości przepływu
Dobór kolumny w zależności od wielkości natrysku i pojemności kolumny
Dodatek odcięcia UV dla faz mobilnych
pK i kwaśne bufory w fazach ruchomych do HPLC
pks zasady w fazie ruchomej do HPLC
Konwersja jednostek ciśnienia
Oszacowanie ciśnienia na kolumnach, w zależności od wielkości cząstek, średnicy i długości kolumny
Lepkość mieszanin rozpuszczalników
Właściwości rozpuszczalnika
Parametr | Charakterystyka |
---|---|
Siła / rodzaj adsorbentu | średniej mocy sorbent na bazie czarnego węgla |
Specjalna powierzchnia | ok. 240 m 2 / g |
Przybliżony zakres zmienności | nC 3/4 do nC 6/7 (temperatura wrzenia od 50 do 150 ° C) |
Przykłady analitów | lekkie węglowodory, 1,3-butadien, benzen (do 2-tygodniowego pobierania próbek duluth) |
Maksymalna temperatura adsorbentu | > 400 ° C |
Zalecana temperatura kondycjonowania | 350-400 ° C |
Zalecana temperatura desorpcji | 350 do 400 ° C (poniżej temperatury kondycjonowania) |
Parametr | Charakterystyka |
---|---|
Siła / rodzaj adsorbentu | średniej mocy sorbent na bazie czarnego węgla |
Specjalna powierzchnia | ok. 240 m 2 / g |
Przybliżony zakres zmienności | nC 3/4 do nC 6/7 (temperatura wrzenia od 50 do 150 ° C) |
Przykłady analitów | lekkie węglowodory, 1,3-butadien, benzen (do 2-tygodniowego pobierania próbek duluth) |
Maksymalna temperatura adsorbentu | > 400 ° C |
Zalecana temperatura kondycjonowania | 350-400 ° C |
Zalecana temperatura desorpcji | 350 do 400 ° C (poniżej temperatury kondycjonowania) |
Parametr | Charakterystyka |
---|---|
Siła / rodzaj adsorbentu | słaby porowaty polimer |
Specjalna powierzchnia | ok. 35 m 2 / g |
Przybliżony zakres zmienności | nC 7 do nC 30 (od 100 do 450 ° C) |
Przykłady analitów | związki aromatyczne (z wyjątkiem benzenu), związki niepolarne o masie cząsteczkowej> 100 ° C, związki polarne o masie cząsteczkowej> 150 ° C, WWA, PCB |
Maksymalna temperatura adsorbentu | 350 ° C |
Zalecana temperatura kondycjonowania | do 325 ° C |
Zalecana temperatura desorpcji | do 300 ° C |