0
Twój koszyk jest pusty...
0
Porównywać
Dodaj produkty do porównania za pomocą ikony wagi, a następnie porównaj ich parametry.
Chromatografia
Dane chromatogramu masowego
Ogromny. 1: Chromatogram masowy wzorców wewnętrznych, SD1 i SD2. Oddzielenie 5 nmol aminokwasów metodą LC-MS Metamino®
Ogromny. Ryc. 2: Chromatogram masowy próbki rzeczywistej: Rozdział aminokwasów w formule piwa Budvar 12˚ (na kolumnę naniesiono 25 µl próbki). Wysoka wydajność i wysoka rozdzielczość naszej kolumny przyczyniają się do dobrej separacji pików. Próbka testowana metodą LC-MS Metamino®
Ogromny. Ryc. 3: Chromatogram masowy próbki rzeczywistej: Rozdział aminokwasów obecnych w surowicy krwi (na kolumnę nałożono 25 µl wytrąconej surowicy). Wysoka wydajność i wysoka rozdzielczość naszej kolumny przyczyniają się do dobrej separacji pików. Próbka testowana metodą LC-MS Metamino®
przygotowanie próbki
Po wyodrębnieniu zawartości z matrycy można przystąpić do przygotowania próbki do analizy LC-MS/GC-MS.
Protokół ten jedynie w skrócie opisuje procedurę przygotowania próbki. Szczegółową procedurę można znaleźć w instrukcji obsługi Metamino®.
Analiza LC-MS przebiega w następujący sposób:
- Odpipetuj 100 μl wyekstrahowanej zawartości (surowicy, osocza, ...) i dodaj 100 μl podłoża wytrącającego. Wiruj przez 30 do 60 sekund przy 1500 g (6000 obr/min).
- Odpipetuj 25 µl wytrąconej próbki i dodaj 10 µl roztworu wzorca wewnętrznego do każdej fiolki do przygotowania próbki.
- Odpipetuj 25 μl roztworu katalizatora do każdej fiolki do przygotowania próbki i wiruj przez 5-10 sekund.
- Odpipetuj 10 μl roztworu odczynnika do każdej fiolki do przygotowania próbki i wiruj przez 5-10 sekund. Pozwól, aby derywatyzacja przebiegała przez co najmniej 2-3 minuty.
- Aktywuj i zrównoważ sorbent w filtrze mikrowirowym dodając:
- 200 µl podłoża aktywacyjnego MSPE, następnie wirować przez 30 do 60 sekund przy 1500 g (6000 obr/min).
- 200 µl podłoża do równoważenia sorbentu MSPE, następnie wirować przez 30 do 60 sekund przy 1500 g (6000 obr/min).
- Wylać płyn przez membranę.
- Rozcieńczyć mieszaninę reakcyjną derywatyzacji 400 µl środka do rozcieńczania i przemywania i wirować przez 5-10 sek.
- Nałożyć rozcieńczoną mieszaninę reakcyjną (zwykle 450-500 µl) na zwilżony sorbent z filtrem mikrowirowym i odstawić na 1-2 minuty. Wiruj przez 30 do 60 sekund przy 1500 g (6000 obr/min).
- Wylać płyn przez membranę.
- Przemyć sorbent w filtrze mikrowirówkowym 200 µl rozcieńczenia i medium płuczącego, a następnie wirować przez 30 do 60 sekund przy 1500 g (6000 obr/min).
- Umieścić filtr mikrowirówkowy w nowej fiolce wirówkowej, dodać 200 µl medium elucyjnego i wirować przez 30 do 60 sekund przy 1500 g (6000 obr/min).
- Przenieść eluat do fiolki autosamplera. Próbka jest gotowa do analizy LC-MS.
Analiza GC-MS przebiega w następujący sposób:
- Odpipetować 25 µl próbki docelowej i 10 µl roztworu wzorca wewnętrznego do każdej szklanej probówki reakcyjnej.
- Odpipetować 20 µl środka redukującego do każdej szklanej probówki reakcyjnej i krótko wstrząsać przez 5 do 10 sekund. Odstaw na 1 do 2 minut.
- Odpipetować 25 µl podłoża podstawowego do każdej szklanej probówki reakcyjnej i dodać 50 µl roztworu odczynnika (derywatyzacji) do każdej szklanej probówki reakcyjnej i wirować przez 5 do 10 sekund.
- Odpipetować 25 µl roztworu katalizatora do każdej fiolki do przygotowania próbki i wirować przez 5 do 10 sekund.
- Odpipetować 25 µl roztworu katalizatora do każdej fiolki do przygotowania próbki i wirować przez 5 do 10 sekund. Odstaw na 1-2 minuty. Emulsję stopniowo dzieli się na dwie warstwy.
- Odpipetuj 50 μl ośrodka ekstrakcyjnego do każdej fiolki do przygotowania próbki i wiruj przez 5 do 10 sekund.
- Odpipetuj 25 μl kwaśnego podłoża do każdej fiolki do przygotowania próbki i wiruj przez 5 do 10 sekund. Następnie wiruj przez 30 do 60 sekund przy 1500 g (6000 obr/min).
- Przenieść warstwę organiczną (górną) (50-100 µl) do fiolki autosamplera z wkładką. Próbkę przygotowuje się do analizy GC-MS.
Zawartość zestawu
Zestaw MetAmino ® zawiera wszystkie odczynniki, pożywki i chemikalia. Zawartość zestawu startowego przedstawiono w poniższych tabelach:
Zawartość zestawu LC-MS na 100 próbek:
| Przedmiot | Rodzaj fiolki | Objętość w fiolce (ml) | Liczba fiolek (100 próbek) |
| Roztwór wzorców aminokwasów SD1 | Fiolka 2 ml | 0,25 | 1 |
| Wzorce aminokwasów SD2 w postaci proszku | Fiolka 2 ml | - | 2 |
| Rozwiązanie z wewnętrznymi standardami (IS) | Fiolka 2 ml | 1.1 | 1 |
| Standardowe rozcieńczenie aminokwasów (AASDM) | Fiolka 4 ml | 1.4 | 1 |
| Medium aktywujące sorbent MSPE (WES) | Fiolka 40 ml | 22 | 1 |
| Medium równoważące sorbent MSPE (EQS) | Fiolka 40 ml | 22 | 1 |
| Roztwór katalityczny (CTS) | Fiolka 4 ml | 2.2 | 1 |
| Odczynnik (derywatyzacja) (RDS) | Fiolka 4 ml | 1.1 | 1 |
| Medium do rozcieńczania i przemywania (DWM) | Fiolka 40 ml | 33 | 2 |
| Medium elucyjne (ELM) | Fiolka 40 ml | 22 | 1 |
| Medium wytrącające (PM) | Fiolka 40 ml | 11 | 1 |
| Przedmiot | Ilość (100 próbek) | Notatka |
| Kolumna MetAmino® HPLC | 1 kawałek | Specjalna faza stacjonarna |
| Stojak na maksymalnie 80 probówek wirówkowych | 1 kawałek | |
| Filtry Microspin z sorbentem MetAmino ® | 100 szt | Kolumna wewnętrzna Membrana o grubości 0,22 µm |
| Probówki wirówkowe (2 ml) | 400 szt | |
| Fiolki do automatycznego podajnika próbek (zakrętka 9 mm) | 100 szt | Łącznie z przegrodą i pokrywkami |
Zawartość zestawu GC-MS na 100 próbek:
| Przedmiot | Rodzaj fiolki | Objętość w fiolce (ml) | Liczba fiolek (100 próbek) |
| Standardy aminokwasów SD1 (roztwór) | Fiolka 2 ml | 0,25 | 1 |
| Wzorce aminokwasów SD2 w postaci proszku | Fiolka 2 ml | - | 2 |
| Rozwiązanie z wewnętrznymi standardami (IS) | Fiolka 2 ml | 1.1 | 1 |
| Standardowe rozcieńczenie aminokwasów (AASDM) | Fiolka 4 ml | 1.4 | 1 |
| Środek redukujący (RA) | Fiolka 4 ml | 2,75 | 1 |
| Rozwiązanie podstawowe (BM) | Fiolka 4 ml | 2,75 | 1 |
| Roztwór katalityczny (CTS) | Fiolka 40 ml | 5.5 | 1 |
| Odczynnik (derywatyzacja) (RDS) | Fiolka 40 ml | 5.5 | 1 |
| Medium ekstrakcyjne (EM) | Fiolka 40 ml | 5.5 | 1 |
| Medium kwaśne (AM) | Fiolka 4 ml | 2,75 | 1 |
| Przedmiot | Kwota | Notatka |
| Kolumna MetAmino® GC | 1 kawałek | Specjalna faza stacjonarna |
| Szklane probówki reakcyjne | 100 szt | - |
| Stojak na maksymalnie 80 probówek reakcyjnych | ||
| Fiolki do automatycznego podajnika próbek (zakrętka 9 mm) | 100 szt | Łącznie z przegrodą i pokrywkami |
| Wkładki do fiolek autosamplera | 100 szt | - |
Opis
Nasze zestawy MetAmino ® LC-MS i GC-MS zapewniają szybką, niezawodną, powtarzalną i dokładną procedurę analizy aminokwasów, która obejmuje zarówno przygotowanie próbki, jak i rozdział chromatograficzny.
Metoda LC-MS opiera się na mikroekstrakcji do fazy stałej przy użyciu specjalnych filtrów mikrospinowych ( MSPE ) z nowo opracowanym sorbentem i zintegrowaną membraną 0,22 µm, metoda GC-MS wykorzystuje mikroekstrakcję ciecz-ciecz ( LLME ) do przygotowania. Po tej wstępnej obróbce próbkę analizuje się w LC-MS (GC-MS). W sumie przygotowanie próbki do LC-MS zajmuje około 8 minut, a analiza próbki 12 minut, więc cały czas trwania eksperymentu wynosi tylko 20 minut. Całkowity czas eksperymentu GC-MS jest jeszcze krótszy – około 17 minut.
Ten unikalny zestaw spełnia wszystkie wymagania laboratoryjne i jest przeznaczony dla wszystkich użytkowników końcowych poszukujących prostej metody analitycznej i wysokiej wydajności separacji.
Często zadawane pytania dotyczące MetAmino
Jaki jest rodzaj membrany wewnątrz filtra wirowego?
- Membrana wykonana jest z materiału NYLON, a jej porowatość wynosi 0,22 µm. Jego średnica jest zoptymalizowana do użytku z danym filtrem obrotowym.
Czy istnieje możliwość rozbudowy zestawu MetAmino® o inne anality?
- Tak, zestaw MetAmino ® można dalej rozbudowywać. Skontaktuj się z nami w celu uzyskania szczegółowych informacji.
Czy mogę używać zestawu MetAmino ® do badania moczu?
- Tak, zestaw MetAmino ® może być używany do analizy moczu. Próbka nie może zawierać białek, dlatego przed użyciem zestawu należy ją potraktować w zwykły sposób (wirowanie, filtracja).
Czy możemy zamówić odczynniki osobno?
- Tak, cały zestaw odczynników można zamówić pod numerem katalogowym MAK-5857-L002 .
Jakie jest ciśnienie podczas analizy LC/MS?
- Na początku analizy ciśnienie wynosi 380 barów, na końcu 200 barów.
Czy MRM dla aminokwasów wymienionych w zestawie MetAmino ® są generowane po czy przed derywatyzacją standardów?
- Przejścia MRM dla AA wymienione w podręczniku są wymienione jako przejścia pochodnych AA, a nie natywne AA.
Czy próbkę paszy należy poddać hydrolizie przed użyciem zestawu MetAmino ® ?
- Wytrącanie przy użyciu ośrodka wytrącającego (PM) nie jest niezbędnym krokiem do udanej derywatyzacji próbki. Zestaw został przetestowany przede wszystkim pod kątem analizy biopłynów, które często zawierają peptydy. Aby zapobiec ich wytrącaniu podczas derywatyzacji, w protokole przygotowania próbki uwzględniono etap wytrącania.
- Jeśli wymagana jest całkowita analiza wolnych i związanych z peptydami aminokwasów, w takim przypadku zalecamy zhydrolizowanie próbki, a następnie wysuszenie części zhydrolizowanej próbki w strumieniu azotu lub w speedvacu. Rozpuść wysuszoną pozostałość w 25 µl dejonizowanej wody lub 0,1 M wodnym roztworze HCl (dla lepszej rozpuszczalności) i postępuj zgodnie z zaleceniami, dodając 10 µl roztworu IS.
- Jeśli chodzi o hydrolizę peptydów, stosowane dodatki (fenol, tiodiglikol) w pożywce do hydrolizy mogą być również derywatyzowane (prawdopodobnie niewidoczne w „ pełnym skanie ”). Dlatego jako medium do hydrolizy zalecamy 6M HCl.
Czy możemy zamówić zestaw MetAmino ® GC/MS do przygotowania 400 próbek?
- Jeszcze nie, aktualnie posiadamy tylko zestaw MetAmino ® GC/MS do przygotowania 100 próbek. Zestaw ten można zamówić pod numerem katalogowym MAK-5857-BA01.
W tabeli znajduje się 78 aminokwasów, z których część nie znajduje się w dostępnych standardowych mieszankach - więc czy powinniśmy polegać na przejściach MRM i patrzeć na czas retencji, czy też są to standardy, które powinniśmy kupić, jeśli chcemy je oznaczyć?
- Dla celów ilościowych zestaw MetAmino zawiera - jedna fiolka roztworu wzorcowego SD1 zawarta w zestawie zawiera 33 aminokwasy: AAA, ABA, ALA, APA, ARG, ASP, BAIBA, CC, CIT, CTH, GABA, GLU, GLY , GPR , HIS, HLY , HYP, ILE, LEU, LYS, MET, 1MHIS, 3MHIS, ORN, PHE, PHP, PRO, SAR, SER, THR, TPR, TYR, VAL i SD2 fiolka z liofilizowaną mieszaniną 3 aminokwasów : ASN, GLN, TRP. Jednak zestaw aminokwasów można dalej rozszerzyć na inne związki zawierające pierwszorzędowe lub drugorzędowe aminowe grupy funkcyjne.
- Masy (m/z) podane w instrukcji są prawidłowe i reprezentują jony M+H+. Masy (m/z) i czasy retencji z instrukcji uzyskano z instrumentu liniowej pułapki jonowej LTQ, ale dane z Certyfikatu Analizy uzyskano z instrumentu Q Exactive plus HRMS. W obu przypadkach zastosowano tę samą kolumnę, natężenie przepływu i skład fazy ruchomej. Czasy retencji (RT) są wartościami doświadczalnymi, a rozbieżności, szczególnie w przypadku późno eluujących związków, byłyby spowodowane użyciem różnych przyrządów LC/MS.
Przegląd sorbentów MSPE
Sorbenty do techniki MSPE dobierane są tak, aby obejmowały jak najszerszy zakres zastosowań. MSPE SpeExtra C18 to hydrofobowy rodzaj oktadecylowego żelu krzemionkowego ze specjalną końcówką o bardzo szerokim zastosowaniu. Nadaje się do szerokiego zakresu analitów, wykazując gorszą retencję dla związków polarnych. MSPE SpeExtra C18-P to modyfikowany polarnie monomeryczny oktadecylowy żel krzemionkowy. Oferuje różne rodzaje oddziaływań: dipol-dipol, π-π i hydrofobowe. Dlatego nadaje się do związków aromatycznych i polarnych. Sorbent polimerowy MSPE SpeExtra HLB o dużej powierzchni właściwej i specjalnej osłonie końcowej. Posiada hydrofilową i lipofilową modyfikację zapewniającą uniwersalne zastosowanie i większą pojemność niż żel krzemionkowy C18.
| Sorbent MSPE | Wielkość cząstek [µm] | Powierzchnia właściwa [m 2 /g] | ||
| C18 | 60 | 310 | ||
| C18-P | 60 | 310 | ||
| HLB | 30 | 850 |
Oczyszczanie i testowanie na konopie
Konopie zawierają setki kannabinoidów, przy czym kannabidiol (CBD) występuje w największej ilości w roślinie, a Δ 9-tetrahydrokannabinol (THC) jest aktywnym składnikiem wywołującym efekty psychotropowe. Istnieje jednak wiele innych związków, które są wytwarzane przez konopie indyjskie i zostały zbadane pod kątem ich działania leczniczego. Ograniczenie to często wymaga obróbki destylowanego ekstraktu z konopi (usunięcie THC z ekstraktu wyjściowego) i można je osiągnąć za pomocą chromatografii preparatywnej, takiej jak system puriFlashR XL-Cannabis. Analizę HPLC materiału wyjściowego (destylatu), frakcji zebranych podczas procesu oczyszczania oraz produktu końcowego można przeprowadzić za pomocą systemu analitycznego Advion AVANT HPLC-UV. Zarówno metody oczyszczania, jak i analityczne są przedstawione w tej piwonii i stanowią kompletne rozwiązanie do usuwania THC w przemyśle konopnym.
- Urządzenie puriFlah ® L-Cannabis o wydajności do 4,3 kg/dzień (kolumny do 15 cm ID)
- Narzędzie do konopi puriFlah ® XL o wydajności do 12,2 kg/dzień (kolumny do 20 cm ID)
- Czytnik płytek Plate Express TLC
Faza dla SPE
Ta strona zawiera przegląd dostępnych kolumn ekstrakcji fazy stałej (SPE), w tym parametrów technicznych. Dodatkowe informacje o produkcie można znaleźć w katalogu produktów , który zawiera pudełka i dyski SPE, produkty dSPE, kolektory, produkty SPE online i pompy próżniowe.
Clean up - hydrofobowa faza odwrócona
| Phase | Particle size (µm) | Pore Size (A) | Surface Area (m2/g) | Carbon Load (%) | End Capping | Feature |
|---|---|---|---|---|---|---|
| C2 Ethyl | 60 | 500 | 6,6 | YES/NO | ||
| C4 n-Butyl | 60 | 500 | 8,5 | YES | ||
| C8 Octyl | 60 | 500 | 11,1 | YES/NO | ||
| C18 Octadecyl | 60 | 500 | 21,7 | YES/NO | ||
| C30 Tricontyl | 60 | 500 | 20,0 | YES | ||
| Cyclohexyl | 60 | 500 | 11,6 | YES/NO | ||
| Phenyl | 60 | 500 | 11,0 | YES/NO |
Clean up - normalna faza hydrofilowa
| Phase | Particle size (µm) | Pore Size (A) | Surface Area (m2/g) | Carbon Load (%) | Feature | |
|---|---|---|---|---|---|---|
| Silica | 0,77 | 60 | 500 | N/A | ||
| Diol | 0,77 | 60 | 500 | 8,0 | ||
| Cyanopropyl | 0,77 | 60 | 500 | 9,0 | ||
| Florisil | 0,82 | 60 | 500 | N/A | ||
| Alumina, Acidic | 60 | 500 | N/A | |||
| Alumina, Basic | 60 | 500 | N/A | |||
| Alumina, Neutral | 60 | 500 | N/A | |||
| Carbon | N/A | 120/140 mesh |
Faza stacjonarna dla GC
Faza stacjonarna LION
Na tej stronie przedstawiamy przegląd dostarczonych faz stacjonarnych do chromatografii gazowej (GC). Każda zawiera szczegółowe informacje na temat swoich funkcji i aplikacji, które są dla nich odpowiednie. W katalogu produktów można następnie wybrać odpowiednią kwarcową lub metalową kolumnę kapilarną do GC.
Kwarcowe kolumny kapilarne
| Faza stacjonarna | Ograniczenia temperatury | Skład chemiczny | Kod USP |
|---|---|---|---|
| LN-1 | -60 do 370°C | 100% polisiloksanu dimetylu | G2 |
| LN-1 MS | -60 do 370°C | 100% polisiloksanu dimetylu | G2 |
| LN-1 HT | -60 do 430°C | 100% polisiloksanu dimetylu | - |
| LN-5 | -60 do 370°C | 5% difenyl / 95% dimetylopolisiloksan | G27 |
| LN-5 Sil MS | -60 do 370°C | 5% difenyl / 95% dimetylopolisiloksan | G27 |
| LN-5 MS | -60 do 350°C | 5% fenylo-arylen-95% dimetylopolisiloksan | G27 |
| LN-5 HT | -60 do 430°C | 5% difenyl / 95% dimetylopolisiloksan | - |
| LN-35 | 50 do360°C | 35% difenyl / 65% dimetylopolisiloksan | G42 |
| LN-35 HT | -60 do 400°C | 35% difenyl / 65% dimetylopolisiloksan | G42 |
| LN-17 | 40 do 340°C | 50% difenyl / 50% dimetylopolisiloksan | G3 |
| LN-624 | -20 do 260°C | 6% cyjanopropylofenyl / 94% dimetylopolisiloksan | G43 |
| LN-FFAP | 40 do 260°C | Glikol polietylenowy modyfikowany kwasem nitro-tereftalowym | G35 |
| LN-1701 | -20 do 300°C | 14% cyjanopropylofenyl / 86% dimetylopolisiloksan | G46 |
| LN-XLB | 30 do 360°C | Fazy o niskiej polarności | - |
| LN-XLB-HT | 30 do 400°C | Fazy o niskiej polarności | - |
| LN-WAX | 40 do 260°C | Glikol polietylenowy | G16 |
| LN-WAX Plus | 20 do 260°C | Glikol polietylenowy | G16 |
Faza stacjonarna Restek
Kwarcowe kolumny kapilarne
| Faza stacjonarna | Ograniczenia temperatury | Skład chemiczny | Kod USP |
|---|---|---|---|
| Rxi®-1MS | -60 do 350 ° C | 100% polisiloksanu dimetylu | G2 |
| Rxi®-1HT | -60 do 400 ° C | 100% polisiloksanu dimetylu | - |
| Rxi®-5MS | -60 do 350 ° C | 5% difenyl / 95% dimetylopolisiloksan | G27 |
| Rxi®-5Sil MS | -60 do 350 ° C | faza silarylenowa (selektywność jako 5% fenylo 95% dimetylopolisiloksan) | - |
| Rxi®-5HT | -60 do 400 ° C | 5% difenyl / 95% dimetylopolisiloksan | - |
| Rxi®-XLB | 30 do 360 ° C | Fazy o niskiej polarności | - |
| Rxi®-35Sil MS | 50 do 360 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji (selektywność jako 35% difenyl / 65% dimetylopolisiloksan) | - |
| Rxi®-624Sil MS | -60 do 320 ° C | faza silarylenowa (selektywność jako 6% cyjanopropylofenyl / 94% dimetylopolisiloksan) | - |
| Rxi®-17 | 40 do 320 ° C | 50% difenyl / 50% dimetylopolisiloksan | - |
| Rxi®-17Sil MS | 40 do 360 ° C | faza silarylenowa (selektywność jako 100% polisiloksanu fenylometylowego) | G3 |
| Rtx®-1 | -60 do 350 ° C | 100% polisiloksanu dimetylu | G1, G2, G38 |
| Rtx®-1 F i F | -60 do 350 ° C | 100% polisiloksan dimetylu (oplimizowany) | - |
| Rtx®-1PONA | -60 do 340 ° C | 100% polisiloksan dimetylu (oplimizowany) | - |
| Rtx®-2887 | -60 do 360 ° C | 100% polisiloksan dimetylu (oplimizowany) | - |
| Rtx®-5 | -60 do 350 ° C | 5% difenyl / 95% dimetylopolisiloksan | G27, G36 |
| Rtx®-5 Amina | -60 do 315 ° C | 5% difenyl / 95% dimetylopolisiloksan (oplimizowany) | - |
| Rtx-5 PONA | Od 60 do 325 ° C | 5% difenyl / 95% dimetylopolisiloksan (oplimizowany) | - |
| Rtx®-1301 | -20 do 280 ° C | 6% cyjanopropylofenyl / 94% dimetylopolisiloksan | G43 |
| Rtx®-624 | -20 do 240 ° C | 6% cyjanopropylofenyl / 94% dimetylopolisiloksan | G43 |
| Rtx®-20 | -20 do 320 ° C | 20% difenyl / 80% dimetylopolisiloksan | G28, G32 |
| Rtx®-35 | 40 do 320 ° C | 35% difenyl / 65% dimetylopolisiloksan | G42 |
| Rtx®-35 MS | 40 do 320 ° C | 35% difenyl / 65% polisiloksan dimetylu (zoptymalizowany) | G42 |
| Rtx®-35 Amina | 40 do 320 ° C | 35% difenyl / 65% polisiloksan dimetylu (zoptymalizowany) | G42 |
| Rtx®-1701 | -20 do 280 ° C | 14% cyjanopropylofenyl / 86% dimetylopolisiloksan | G46 |
| Rtx®-200 | -20 do 340 ° C | Polisiloksan trifluoropropylometylowy | G6 |
| Rtx®-200MS | -20 do 340 ° C | Polisiloksan trifluoropropylometylowy | G6 |
| Rtx®-50 | 40 do 320 ° C | 100% metylopenylo-polisiloksan | G3 |
| Rtx®-65 | 50 do 300 ° C | 65% difenyl / 35% dimetylopolisiloksan | G17 |
| Rtx®-65TG | 40 do 370 ° C | 65% difenyl / 35% polisiloksan dimetylu (zoptymalizowany) | - |
| Rtx®-225 | 40 do 240 ° C | 50% cyjanopropylometyl / 50% fenylometylopolisiloksan | G7, G19 |
| Rtx®-440 | 20 do 340 ° C | Faza średnio polarna | - |
| Rtx®-Wax | 20 do 250 ° C | Carbowax® glikol polietylenowy | G14, G15, G16 |
| Stabilwax® | 40 do 250 ° C | Carbowax® glikol polietylenowy | G14, G15, G16 |
| Stabilwax®-DB | 40 do 250 ° C | Carbowax® glikol polietylenowy | - |
| Stabilwax®-DA | 40 do 250 ° C | Carbowax® glikol polietylenowy | G25, G35 |
| FAMEWAX | 20 do 250 ° C | Glikol polietylenowy | - |
| Rt ™ -CW20M F & F | 60 do 220 ° C | Carbowax® glikol polietylenowy | - |
| Rt™ -2330 | 0-275 ° C | Polisiloksan bis-cyjanopropylowy | G48 |
| Rt™ -2560 | 20 do 250 ° C | 90% biscyanopropyl / 10% fenylo-cyjanopropylopolisiloksan | - |
| Stx™ -500 | -60 do 380 ° C | Karboran / dimetylopolisiloksan | - |
| Rtx®-VMS | -40 do 260 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| Rtx®-502,2 | -20 do 270 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| Rtx®-VRX | -40 do 260 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| Rtx®-VGC | -40 do 260 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| Rtx®-Volatiles | -20 do 280 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| Rtx®-CLP pestycydy | -60 do 340 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| Rtx®-CLPesticides2 | -60 do 340 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| Stx™ -CLPestycydy | -60 do 330 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| Stx™ -CLPesticides2 | -60 do 330 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| Rtx®-OPPesticides | -20 do 330 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| Rtx®-OPPesticides2 | -20 do 330 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| Rtx®-Dioxin | -60 do 380 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| Rtx®-Dioxin2 | 20 do 340 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| Rtx®-PCB | 30 do 340 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| Rtx®-1614 | -60 do 360 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| Rt™ -PAH | 80 do 285 ° C | Faza ciekłokrystaliczna | - |
| Rtx®-TNT | -20 do 310 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| Rtx®-TNT 2 | -20 do 310 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| Rtx®-Biodiesel TG | do 380 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| Rt™ -TCEP | 0 do 135 ° C | 1,2,3-tris [2-cyjanoetoksy] propan | - |
| Rtx®-BAC1 | -20 do 260 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| Rtx®-BAC2 | -20 do 260 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| Rt™ -ßDEXcst | 40 do 230 ° C | Faza chiralna | - |
| Rt™ -βDEXm | 40 do 230 ° C | Faza chiralna | - |
| Rt™ -ßDEXsa | 40 do 230 ° C | Faza chiralna | - |
| Rt™ -ßDEXse | 40 do 230 ° C | Faza chiralna | - |
| Rt™ -ßDEXsm | 40 do 230 ° C | Faza chiralna | - |
| Rt™ -ßDEXsp | 40 do 230 ° C | Faza chiralna | - |
| Rt™ -yDEXsa | 40 do 230 ° C | Faza chiralna | - |
Metalowe kolumny kapilarne
| Faza stacjonarna | Ograniczenia temperatury | Skład chemiczny | Kod USP |
|---|---|---|---|
| MXT®-1 | -60 do 430 ° C | 100% polisiloksanu dimetylu | G1, G2, G38 |
| MXT®-1HT SimDist | -60 do 430 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| MXT®-1 SimDist | -60 do 430 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| MXT®-2887 | -60 do 400 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| MXT®-5 | -60 do 430 ° C | 5% difenyl / 95% dimetylopolisiloksan | G27, G36 |
| MXT®-20 | -20 do 320 ° C | 20% difenyl / 80% dimetylopolisiloksan | G28, G32 |
| MXT®-35 | 0 do 310 ° C | 35% difenyl / 65% dimetylopolisiloksan | G42 |
| MXT®-50 | 0 do 290 ° C | 100% metylopenylo-polisiloksan | G3 |
| MXT®-65 | 50 do 300 ° C | 65% difenyl / 35% dimetylopolisiloksan | G17 |
| MXT®-65TG | 20 do 370 ° C | 65% difenyl / 35% polisiloksan dimetylu (zoptymalizowany) | - |
| MXT®-624 | -20 do 240 ° C | 6% cyjanopropylofenyl / 94% dimetylopolisiloksan | G43 |
| MXT®-1301 | -20 do 280 ° C | 6% cyjanopropylofenyl / 94% dimetylopolisiloksan | G43 |
| MXT®-1701 | -20 do 280 ° C | 14% cyjanopropylofenyl / 86% dimetylopolisiloksan | G46 |
| MXT®-200 | -20 do 400 ° C | Polisiloksan trifluoropropylometylowy | G6 |
| MXT®-WAX | 40 do 260 ° C | Carbowax® glikol polietylenowy | G14, G15, G16 |
| MXT®-500 SimDist | -60 do 430 ° C | Węglowodorowo-siloksanowy polimer | - |
| MXT®-502.2 | -20 do 270 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| MXT®-Biodiesel TG | -60 do 430 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
| MXT®-Volatiles | -20 do 280 ° C | Faza specyficzna dla aplikacji | - |
Kolumny PLOT
| Faza stacjonarna | Ograniczenia temperatury | Skład chemiczny | Kod USP |
|---|---|---|---|
| Rt®-Alumina BOND | do 200 ° C | Al 2 O 3 (dezaktywacja Na 2 SO 4 ) | - |
| Rt®-Alumina BOND | do 200 ° C | Al 2 O 3 (dezaktywacja KCl) | |
| Rt®-Msieve 13X | do 300 ° C | Ekran cząsteczki 13X | - |
| Rt®-Msieve 5A | do 300 ° C | Sito molekularne 5A | - |
| Rt®-Q-BOND | do 320 ° C | 100% diwinylobenzenu | - |
| Rt®-QS-BOND | do 250 ° C | Porowaty homopolimer diwinylobenzenu | - |
| Rt®-S-BOND | do 250 ° C | Diwinylobenzen 4-winylopirydyna | - |
| Rt®-U-BOND | do 190 ° C | Diwinylobenzen glikol etylenowy / akrylan dimetylu | - |
Metalowe ogrodzenie kolumny
| Faza stacjonarna | Ograniczenie temperatury | Skład chemiczny | Kod USP |
|---|---|---|---|
| Mtx®-Alumina Bond | do 200 ° C | Al 2 O 3 (dezaktywacja Na 2 SO 4 ) | - |
| Mtx®-MSieve 5A | do 300 ° C | Sito molekularne 5A | - |
Faza stacjonarna SGE 
Kwarcowe kolumny kapilarne
| Faza stacjonarna | Ograniczenia temperatury | Skład chemiczny | Kod USP |
|---|---|---|---|
| forte BP1 | -60 do 360 ° C | 100% polisiloksanu dimetylu | G1, G2, G38 |
| forte SolGel 1MS | 0 do 380 ° C | 100% polisiloksanu dimetylu | G1, G2, G38 |
| forte BPX1 | -30 do 430 ° C | 100% polisiloksan dimetylu (zoptymalizowany) | - |
| forte BP1 PONA | -60 do 360 ° C | 100% polisiloksan dimetylu (zoptymalizowany) | - |
| forte BP5 | -60 do 360 ° C | 5% fenylo-metylo-polisiloksan | G28, G32 |
| forte BPX5 | -40 do 370 ° C | 5% fenylopolisilofenylenosiloksan | - |
| forte HT5 | 10 do 400 ° C | 5% fenylo-polikarbonu siloksanu | - |
| forte HT8 | -20 do 370 ° C | 8% polisiarczan fenylo-polikarbonu | - |
| forte BPX35 | 0 do 370 ° C | 35% polisilofenylenosiloksanu fenylu | G42 |
| forte BPX608 | 0 do 370 ° C | 35% polisilofenylenosiloksanu fenylu | G42 |
| forte BPX50 | 20 do 370 ° C | 50% polisilofenylenosiloksanu fenylu | G3 |
| forte BPX70 | 50 do 260 ° C | 70% cyjanopropylopolisilofenylenosiloksanu | G48 |
| forte BPX90 | do 280 ° C | 90% cyjanopropylopolisilofenylenosiloksanu | - |
| SolGel-WAX | 30 do 300 ° C | Glikol polietylenowy (PEG) | G14, G15, G16 |
| forte BP20 (WAX) | 20-280 ° C | Glikol polietylenowy (PEG) | G14, G15, G16 |
| forte BP21 (FFAP) | 35 do 250 ° C | Glikol polietylenowy (zoptymalizowany pod względem PEG) | G25, G35 |
| forte BP10 (1701) | -20 do 300 ° C | 14% cyjanopropylofenylopolisiloksanu | G46 |
| forte BP225 | 40 do 260 ° C | 50% cyjanopropylofenylopolisiloksanu | G7, G19 |
| forte BPX-Volatiles | 0 do 300 ° C | Cyjanopropylofenylopolisiloksan | G43 |
| forte BP624 | 0 do 240 ° C | Cyjanopropylofenylopolisiloksan | G43 |
| forte CYDEX-B | 30 do 240 ° C | Faza chiralna | - |
UHPLC
Chromatografia cieczowa o ultrawysokiej wydajności jest kamieniem milowym w dziedzinie chromatografii cieczowej. Wykorzystuje kolumny chromatograficzne o cząstkach <2μm, które są używane w instrumentach analitycznych zdolnych do pracy z wysokimi ciśnieniami. Pozwala to na bardzo szybką separację z wysoką wydajnością. UHPLC jest wysoce wydajną techniką chromatograficzną, która oferuje pracę z szerokim zakresem przepływów i znacznie skraca czas analizy.
- Technologia oprzyrządowania
- Kolumny UHPLC
- Aplikacja i wsparcie
- Osiągnij moc UHPLC na dowolnym urządzeniu LC
- Odczynniki
Wpływ na wydajność
Wraz ze zmniejszaniem się rozmiaru cząstek wzrasta efektywność rozdziału (patrz wykres poniżej). Przy mniejszej średnicy cząstki wzrasta znacznie nacisk na kolumnę. Powoduje to bardzo wysokie ciśnienie w dłuższych kolumnach LC. Oznacza to, że w przypadku standardowych systemów LC nie można stosować kolumn z cząstkami 1,9 μm o tej samej długości co zwykle 5 μm kolumny HPLC (np. 250 mm). Dlatego też kolumny UHPLC mają niższą lub podobną skuteczność niż kolumny standardowe HPLC. Tym, co odróżnia kolumnę UHPLC od normy, jest znacznie szybszy czas analizy, ale nie wydajność.
Jeśli potrzebujesz zwiększyć wydajność separacji, musisz najpierw wybrać odpowiednią fazę stacjonarną , której selektywność będzie najwyższa dla pożądanej separacji.